細胞清除支原體試劑Mynox?使用方法

Mynox?是一種無抗生素的生物試劑，可以整合到支原體膜中，損害其完整性。它的活性基于生物物理機制，因此不會產生耐藥菌株。其結果是滲透性內流導致支原體膜完全解體。被根除支原體，細胞可以立即恢復其原有的形態和正常增殖速度。迄今為止，Mynox?尚未顯示會導致正常細胞特性的任何變化。

珍貴生物樣品清除支原體試劑Mynox?使用方法

一、貼壁細胞的處理方法

1、制備細胞和『治療液』

用無菌的6厘米培養皿中加入2.8 ml含5% (v/v) FCS的標準細胞培養基。加入200μl Mynox?(1瓶)。

加入2ml新鮮胰蛋白酶化的10^4 - 10^5個細胞。

包括細胞在內的處理混合物的總體積為5ml。

2、Mynox?的處理和去除

在正常生長條件下，將細胞與『治療液』混合物保持一整個傳代過程(約6至8天)。然后除去含有Mynox?的培養基，將細胞在標準培養基中傳代。8天未上限，若細胞未長滿皿底，終止處理，丟棄含有Mynox?的培養基，并添加新鮮的標準細胞培養基。

二、懸浮細胞系的處理

1、制備細胞和『治療液』

使用無菌離心管配制『治療液』。加入1.6 ml 0.125%胰蛋白酶和5 mM EDTA。加入200μl Mynox?(1瓶)。將1.6 ml含有10% (v/v) FCS和10^4 - 10^5細胞的標準細胞培養基，從懸浮細胞培養液中轉移到『治療液』混合物中，漩渦。包括細胞在內的處理混合物的總體積為3.4 ml。

2、Mynox?的處理和去除

37℃孵育30分鐘。將細胞輕離心(600 × g) 5分鐘，丟棄上清。將細胞重懸于不含Mynox?的標準細胞培養基中，置于培養瓶中。

三、非包膜病毒的處理

冷凍或新鮮等量的細胞和無細胞碎片的病毒懸浮液可以處理。病毒滴度不影響治療的成功。

1、制備細胞和『治療液』

使用1.5 ml帶安全鎖的無菌反應管配制消毒液。加入1 ml不含FCS的細胞培養基。加入100μl Mynox?。

將含有8% (v/v) FCS的125μl病毒原液轉移到混合物中。漩渦。包括病毒原液的處理混合物的總體積為1.225 ml。

2、Mynox?的處理和去除

在室溫下將消去液孵育2小時。將處理混合物在培養基中稀釋1:10，停止反應。

四、包膜病毒的處理

包膜病毒外脂膜的組成與Mynox?的靶標支原體膜相當。這些病毒也容易受到Mynox?滅活的影響，具體取決于所使用的處理時間和濃度。為了獲得無支原體的病毒懸浮液，并具有可接受的繼代培養水平，初始病毒滴度應高于10^6 TCID50。

冷凍或新鮮等量的細胞和無細胞碎片的病毒懸浮液可以處理。

1、制備細胞和『治療液』

使用無菌15ml螺旋蓋反應管配制消去液。加入4.4 ml不含FCS的細胞培養基。加入100μl Mynox?。將0.5 ml含有8% (v/v) FCS的病毒原液轉入混合物中。漩渦。包括病毒原液的處理混合物的總體積為5ml。

2、處理和Mynox?去除

在室溫下將消去液孵育30分鐘。將處理混合物在培養基中稀釋1:10，停止反應。

五、支原體檢測

經Mynox?處理的細胞培養物和病毒庫應在不使用抗支原體抗生素的情況下再培養四代，然后檢測支原體是否存在以驗證培養純度。

對于高靈敏度的支原體污染檢測，我們推薦使用基于pcr的Venor?GeM支原體檢測試劑盒