支原體檢測方法介紹

支原體污染是細胞培養中的一個常見問題，據報道，大約5-15%的細胞培養物被支原體污染。支原體的高污染率可能是由于其各種來源，如受污染的培養基和血清、原始組織或細胞的污染以及不當操作引起的污染。盡管自然界中存在的支原體有120 多種，但污染細胞的支原體主要有5種，分別為牛源的萊氏無膽甾原體和精氨酸支原體，人源的口腔支原體和發酵支原體，豬源的豬鼻支原體，這5 種支原體占所有支原體污染的95%以上。

我們且來看看每種不同的檢測方法：

1.培養法

檢查支原體采用支原體液體培養基和支原體半流體培養基。半流體培養基在使用前應煮沸10-15min，冷卻至56℃，然后加入滅能小牛血清(培養基：血清8:2)，并可酌情加入適量青霉素，充分搖勻。液體培養基無需煮沸，其他同樣。

2. 指示細胞培養法(DNA染色法)

將供試品接種于指示細胞(無污染的Vero細胞或經國家藥品鑒定機構認可的其他細胞)中培養，用特意熒光染料染色。如支原體污染供試品，在熒光顯微鏡下可見附在細胞表面的支原體DNA著色。

3.PCR 方法

傳統的支原體檢測方法通常需要較長時間，如培養法至少需要28天，已經無法滿足如CAR-T等藥物放行的時間要求，亟需新的檢測方法以供選擇。核酸擴增技術(NAT)由于其快速、特異性強，在支原體檢測中越來越受到人們的青睞，但首先必須達到或超過藥典方法的靈敏度。使用NAT快速檢測支原體已有很多技術和文獻的發表，我們以《A Rapid and Sensitive Nucleic Acid Amplification Technique for Mycoplasma Screening of Cell Therapy Products》為例

該方案涉及從細胞治療產品樣品中提取DNA，通過PCR擴增支原體核酸，并通過凝膠電泳進行可視化分析。通過添加規定數量的支原體基因組DNA(gDNA)，避免使用活支原體來證明檢測敏感性，該DNA通過經驗推導的基因組拷貝與CFU(GC/CFU)比值轉換為CFU/mL值。為了滿足監管要求，新的檢測方法必須經過內部認證，以滿足或超過藥典方法的靈敏度，對于支原體屬的靈敏度為10 CFU/mL。

北京締一生物科技有限公司國內總代理的德國MB產品，10CFU支原體檢測限標準品10 CFU Mycoplasma Sensitivity Standards

10CFU支原體檢測限標準品產品特點

（1）來自英國菌種保藏中心NCTC，是滅活支原體；

（2）傳代次數少，支原體無變異；

（3）產品為凍干粉，保證其穩定性；

（4）分析證書（COA）提供該批次GU：CFU比值（基因組單位/菌落形成單位比值）；

（5）支原體已滅活，保障細胞實驗室安全。